Help
Options
Didn't know it?
click below
click below
Knew it?
click below
click below
Don't Know
Remaining cards (0)
Know
retry
shuffle
restart
0:00
Embed Code - If you would like this activity on your web page, copy the script below and paste it into your web page.
Normal Size Small Size show me how
Normal Size Small Size show me how
Biologie moléculaire
Biologie moléculaire 3 L3 SDV BCM
| Question | Answer |
|---|---|
| Composition et structure des acides nucléiques : Quelle est la composition des ADN et ARN? | ADN = désoxyribonucléotides ARN = ribonucléotides Bases puriques (G et A), 2 cycles Bases pyrimidiques (C et T/U) Liaisons phosphoesters : hydrolyse liaison par DNase ou RNase, forme liaison par ADN/ARN ligase |
| Composition et structure des acides nucléiques : Quels sont les caractéristiques communes? | Orientation 5’ phosphate vers 3’ OH Liaisons phosphodiesters compose squelette ose-phosphate |
| Composition et structure des acides nucléiques : Quels sont les caractéristiques qui diffères? | Liaisons phosphodiesters moins stable pour ARN Groupement hydroxyle sur le ribose |
| Composition et structure des acides nucléiques : D'après leurs caractéristiques, comment sont-ils définies? | Définition par leur séquence et taille b < kb (génome virus) < Mb (génomes bactériens) < Gb (génome humain) ADN ≈10 nucléotides = oligonucléotides |
| Composition et structure des acides nucléiques : Quel est la structure des ARN? | Simples brins -> structures secondaires ARNm pas structure particulière ARNr, ARNt ou ARNs structures particulières : - Epingle à cheveux - Tige-boucle avec bulge (bourgeon) = base non apparié - Pseudnoeuds |
| Composition et structure des acides nucléiques : Quel est la structure des ADN? | 2 brins complémentaires et antiparallèles Liaisons hydrogènes et hydrophobes A=T et C≡G (- = une liaison hydrophobe) Hélices A, B et Z -> B : plus courant, pas d’hélice = 3,4nm = 10,4pb. Tourne vers la droite Linéaire ou circulaire |
| Composition et structure des acides nucléiques : Qu'est ce que la compaction de l'ADN? | Surenroulement -> supertour : ajoute ou enlève tours d’hélices A droite = sens opposé de l’ADN = ADN surenroulé négativement (dans cellules) |
| Composition et structure des acides nucléiques : Parmi les enzymes spécifiques, on retrouve les topoisomérases. Quels sont les deux types? | Les topoisomérases (coupures et soudures) : • Types I : coupe un brin, relâche molécule • Types II : coupe 2 brins, génère/enlève supertours |
| Composition et structure des acides nucléiques : Parmi les enzymes spécifiques, on retrouve les nucléases. Lesquels sont-ils selon le substrat et le mode d'action? | Les nucléases (hydrolysent) : • Selon le substrat : DNase ou RNase • Selon mode action : exonucléase (digère extrémité) ou endonucléase (coupe intérieur) |
| Composition et structure des acides nucléiques : Parmi les enzymes spécifiques, on retrouve les nucléases. Quels sont les différents DNase et RNase? | DNase I : coupe extrémité 5’P et 3’OH DNase II : coupe extrémité 3’P et 5’OH RNase A : pyrimidine, ARN simple brin RNase III : digère duplexes ARN RNase H : digère ARN complexe ADN/ARN |
| Composition et structure des acides nucléiques : Parmi les enzymes spécifiques, on retrouve les polymérase. Quels sont les différents types? | Les polymérase (synthétisent) : Synthèse : orientation 5’-3’. ADNpol : réplication, matrice ADN, amorce ARN ARNpol : transcription, matrice ADN, pas amorce Transcriptase inverse : transcription inverse, synthétise ADN, matrice ARN, amorce ADN |
| Composition et structure des acides nucléiques : Parmi les enzymes spécifiques, on retrouve les autres enzymes. Quels sont les différents types? | T4 ADN ligase : ligature/religuer molécule ADN. Phosphatase alcaline : déphosphoryle ADN en 5’. T4 polynucléotide kinase : ajout phosphate en 5’. |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Extraction : Qu'est ce? | Extraire : isoler/purifier les acides nucléiques, lyse cellule Charge négative due groupement phosphate Solubilité dans l’eau pure et tampon Tris (pH = 7-8) |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Extraction : Quels sont les différents réactifs qui permettent la lyse des cellules? (sans exemples) | Détergent (amphiphile) : désorganise les membranes. Agents chaotropique : dénature protéines. Agent réducteur : réduit ponts disulfures (protéine). Hydrolase : enzyme hydrolyse molécule cible. |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Extraction : Quels sont les différents réactifs qui permettent la lyse des cellules? (seulement les exemples) | Détergent (amphiphile) : SDS, Triton, Tween Agents chaotropique : urée, sel de guanidium, SDS Agent réducteur : DDT, β-mercaptoéthanol Hydrolase : cellulase, lysozyme |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Extraction : Quel appareil, par exemple, permet l'extraction? | Moyen casse les cellules : • Sonicateur : émet ultrason casse les cellules • Presse de French • Chauffer (60°C) |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Purification : Qu'est ce? | Purifier : séparer acides nucléiques du reste de la lyse Elimination débris cellulaire par centrifugation -> culot = débris membranaire ; surnageant = ADN, ARN, contaminants… Utilisation enzyme pour éliminer contaminant. Ex : purifier ADN, utilise RNase |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Purification : Comment peut-on séparer les plasmides et quels sont les différentes séparation de protéines ou autres contaminants? | Séparer les plasmides -> lyse alcaline qui précipite ADN (culot) Séparation différentielle : solvant organique dénature prot Colonne de chromatographie : gel silice (ADN absorbé) ou échange d’anion (lyse, fixation ADN, lavage éthanol, séchage, élution) |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Quantification : Qu'est ce? | Mesure de l’absorbance à 260nm -> Plus élevé pour ADN simple brin = effet d’hyperchromicité |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Quantification : Comment mesure-t-on l'absorbance? Comment calcule-t-on la concentration massique? | Mesure absorbance : spectrophotomètre (cuves 1ml), nanodrop (cuves 1µl) Loi de Beer-Lambert : Cm=(A×e)/l Avec : Cm : concentration massique (ng/µl) ; A = 260nm ; e = coefficient d’extinction massique (ng.cm/µL) ; l = trajet optique (cm) |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Quantification : Quels sont les coefficient d'extinction estimatifs? | • ADN double brin ≈ 50 ng.cm/µL • ADN simple brin ≈ 33 ng.cm/µL • ARN ≈ 40 ng.cm/µL |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Analyser la pureté : Qu'est ce? | Détermination si échantillon contient contaminants ou non. Maximum absorption protéine = 280nm |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Analyser la pureté : Quels sont les ratio pour l'ADN, l'ARN et les autres contaminants? | • ADN : 1,8 < A260/A280 < 2 Inf 1,8 = contaminé par protéine, sup 2 = ADN dégradé (effet hyperchrome) • ARN : 2 < A260/A280 < 2,2 • Pour autre contaminant (phénol, EDTA) : 2 < A260/A230 < 2,2 |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Séparation par électrophorèse : Que permet le gel d'agarose et que contient-il? | Gel agarose : permet voir sur ADN plusieurs formes ou une seule + quantification. Sépare selon la taille (100 à 60 kb) Gel agarose contient tampon Tris, EDTA, TBE ou TEA -> 1% = 1g d’agarose dans 100ml |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Séparation par électrophorèse : Quels sont les tampons de charges utilisé dans les puits d'électrophorèse? Que permet le marqueur de taille? | • Glycérol : alourdit échantillon • Colorant : bleu de bromophénole, xylène cyanol ou orange G • Marqueur de taille (DNA Ladders) -> log(taille) = f(distance ADN) |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Séparation par électrophorèse : Comment se passe la migration et le révélation? | Migration cuve électrophorèse : ADN migre vers pôle positif Coloration ADN par bromure d’éthidium (BET) -> Intercalant de l’ADN mais il est toxique Révélation du gel/ADN par exposition UV |
| Les techniques de bases en biologie moléculaire, Séparation par électrophorèse : Quels sont les autres types d'électrophorèse? | Electrophorèse capillaire : plus petit, migration rapide, séparation de petit fragment Gel acrylamide : migration verticale, résolution plus importante, petit fragment |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vivo : Comment se fait la réplication de l'ADN in vivo chez les procaryotes et eucaryotes? | Semi-conservative : parentaux chez molécules filles Sens 5’-3’ Synthèse continue 3’-5’ -> brin précoce Synthèse discontinu 5’-3’ -> brin retardé |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vivo : Grâce à quoi se fait la réplication de l'ADN in vivo? | Hélicase : ouvre double hélice. Prot SSB lie simple brin et protège ADN gyrase : enlève supertours positifs ADNpol : amorce ARN, synthèse ADN par l’ARNpol = primase Brin retardé = fragment Okazaki (ADN+ARN). Exonucléase 5’-3’ ARN. Ligase. |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Quels sont les réactifs permettant la réplication de l'ADN in vitro? | Matrice : ADN à copier Amorces : oligonucléotides (18-25b). Extrémité OH libre. ADNpol : résiste grande T°. Origine Taq pol. Diffère selon processivités (vitesse) et fidélité (erreur) Tampon réaction avec magnésium 4 dNTP en excès et équimolaire |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Quels sont les deux types d'amorces permettant la réplication de l'ADN in vitro? | Amorce sens -> brin matrice 3’-5’ Amorce antisens -> brin complémentaire 5’-3’ |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Quel appareil permet la réplication de l'ADN in vitro? | Thermocycleur avec bloc chauffant, couvercle chauffant et interface |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Qu'est ce que la courbe de fusion de l'ADN bicaténaire? | Suivi de la dénaturation avec la température A260 = f(température) Effet hyperchrome : ADN simple brin absorbe plus que double brin Température 94-98% pour dénaturation |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Qu'est ce que le Tm courbe de fusion de l'ADN bicaténaire? Comment le calcul-t-on? | Tm = température où 50% ADN dénaturé Calcule du Tm : • Oligonucléotides < 20nt : Tm = 2(A + T) + 4(G + C) • Oligonucléotides > 20nt : N : nb total nucléotides Tm = 2(A + T) + 4(G + C) = x(1 + (N – 20)/20) |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Quels sont les différentes étapes? | Dénaturation (94-98°C) : 1ère = 5min, puis 30s. Hybridation amorces (45-65°C) : 5°C en dessous Tm amorces, 30s. Elongation (68-72°C) : 15s à 1min/kb. |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Comment se passe la dénaturation et l'hybridation de l'ADN? | Dénaturation par chaleur Hybridation thermique : baisse doucement température Dans la glace brin reste dénaturé |
| Les techniques d'amplification par PCR, réplication de l'ADN in vitro : Comment se fait le choix des amorces? | Taille : 18-25nt Tm : 55°C (50-50°C)/ contient en GC : 40-60% Homologie : pas autre même séquence sur matrice Répétition : max 4 Extrémité 3’ : G/C ds 5 dernière base (pas plus 3) Eviter hybridation sur structure secondaire Tm : < 5°C entre amorces |
| Les techniques d'amplification par PCR, PCR : Quels sont les calculs de quantité ADN, matrice, produit non définit, amplicon? | Cycle 25-35fois. Quantité ADN : ADNn=ADNmatrice x 2^n Matrice n’augmente pas : Mn=M0 Produit non défini : Pn=M0xn Amplicon : An=An-1+(An-1+Pn-1)=M0x(2^n–n–1) La quantité de matrice et de produit non définit est très négligeable au bout de 30 cycles |
| Les techniques d'amplification par PCR, Application PCR : Qu'est que l'amplification pour analyse? | Amplifie séquence ADN pour estimer ADN échantillon départ. Quantification par qPCR Utilisation dans investigation criminelle ou archéologie |
| Les techniques d'amplification par PCR, Application PCR : Qu'est que que le clonage? | Fragment d’intérêt = insert digérer par enzyme restriction Vecteur + insert = ADN recombinants Insert en grande quantité grâce PCR Ajout site de restrictions, en 5’, sur les amorces des amplicons Mutagénèse dirigée |
| Les techniques d'amplification par PCR, Application PCR : Qu'est que que la mutagénèse dirigé? | Mutation à un endroit précis. Amorce porte mutation plus longue. Besoin enlever la matrice avec enzyme DpnI reconnait 5’GATC3’ palindromiques méthylés au A et va les cliver |
| Les techniques d'amplification par PCR, Application PCR : Comment recherche-t-on une séquence spécifique? Quels sont les utilités? | Amplification d’une région particulière pour chercher absence/présence séquence. Utile pour recherche pour clonage, en criminalistique avec profil génétique, en santé ou agroalimentaire. |
| Les techniques d'amplification par PCR, PCR multiplex : Qu'est ce? | Utilisation ou amplification de plusieurs séquences (et amorce) en une réaction. Les amorces ne doivent pas s’hybrider entre elles. |
| Les techniques d'amplification par PCR, PCR multiplex : Comment sont réalisé les empreintes génétiques? | Empreintes génétique crée profils génétique. Réalisées grâce amplification région particulière = répétitions séquences des chromosomes |
| Les techniques d'amplification par PCR, PCR multiplex : Grâce à quoi sont réalisé les empreintes génétiques? | Microsatellites 2-5b répétées orientation directe Minisatellites 10-100b répétées en tandem Amorce fluorescente détecte fragment amplifié par mesure fluorescence Electrophorèse capillaire sépare petit fragment |
| Les techniques d'amplification par PCR, RT-PCR : Par quel détection se passe le réverse transcriptase PCR? | Détection de virus à ARN ou PCR sur ARNm eucaryotes pour étudier par exemple transcription ARN -> ADNc, copie du brin complémentaire. |
| Les techniques d'amplification par PCR, RT-PCR : Comment se passe le réverse transcriptase PCR? | ARN -> ADN simple brin Amorce antisens à ARN, transcriptase inverse synthétise ADNc. Digestion ARN par ARNase pour avoir ADNc simple brin. PCR sur amorce sens |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Qu'est ce la qPCR? (Courbe, Phases) | Quantificat° précise matrice initiale Qté ADN = f(nb cycle PCR) 3 phase : exponentiel (100% molécule dupliqué), transitoire (ralentissemt), stationnaire (réact° arrêté) Analyse point finale fin PCR classique qPCR mesure qté ADN après chaque cycle PCR |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Quel est le premier marqueur fluorescent qui peut être utilisé? | SYBR Green I : fluorescence quand lié façon non spécifique ADN double brin, proportionnel à la quantité et la taille. Pas intercalent ADN. Mutagénèse dangereux. |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Quel est le second marqueur fluorescent qui peut être utilisé? | Marqueur spécifique : sonde = ADNc d’une région intérêt avec marqueur. Sonde TaqMan : extrémité avec fluorophore et autre quencher (désactivateur fluorescence) Taq polymérase activité endonucléase 5’-3’ révèle fluorescence |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Que détecte le thermocycleur? | Thermocycleur détecte fluorescence émis par fluorophore jusqu’à 72 réaction en même temps |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Quel courbe obtient pour un tube grâce au thermocycleur? | Courbe pour un tube : fluorescence = f(nb cycle PCR) Augmentation après 18-19 cycle Valeur seuil = threshold line CT : valeur courbe coupe valeur seuil. Nombre de cycles pour lequel la quantité ADN accumulé donne un signal détectable |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Quels sont les conditions optimales pour la courbe obtenu grâce au thermocycleur? | Courbe standard linéaire (R² > 0,980 ou r > 0,990) Efficacité de l’amplification (90-105%) Reproductibilité du résultat (duplicats-triplicats) |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Comment est réalisé la gamme? Quels sont les différents calculs? | Dilut° en série ADN départ (triplicat) Log(fluorescence)=f(nombre cycle) Si doublemt parfait, espace entre les courbes : 2n=facteur dilut° Courbe standard : vérifie condit° optimal qPCR et si courbe bonne pr quantifier échantillons. CT=f(concentration) |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Après la courbe de gamme étalon, on obtient la courbe standard. Dans les valeurs à vérifié quels sont les paramètres du premier? (R) | Linéarité des données expérimentales : R² > 0,98 ou r > 0,99 Coefficient détermination R² et coefficient corrélation linéaire r r = 1, tous les points sont sur la droite |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Après la courbe de gamme étalon, on obtient la courbe standard. Dans les valeurs à vérifié quels sont les paramètres du second? (M) | La pente de la droite M = - 3,32 Définit l’efficacité de l’amplification : E = 10^(-1/pente) |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Après la courbe de gamme étalon, on obtient la courbe standard. Dans les valeurs à vérifié quels sont les paramètres du troisième? (B) | B = valeur du Ct pour une quantité de 1 |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Après la courbe de gamme étalon, on obtient la courbe standard. Dans les valeurs à vérifié quels sont les paramètres du quatrième? (E) | % Efficacité : (E-1) x 100 90% < % Efficacité < 105% Si faible = mauvaise condition hybridation Si sup 100%, amplification en plus de matrice, non spécifique |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Qu'est ce qu'une courbe de fusion? | Vérifie pas amplifié autre chose que molécule d’intérêt Fin PCR, augmente température dénature ADN. Inverse changement température = f(température) |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Quels sont les différentes interprétations en fonction de la courbe de fusion? | Si courbe même allure = pas amplification spécifique Si Tm sup amplification région non spécifique Si Tm inf amorces qui forment dimères |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Dans les analyses de données, quels sont les calculs de la quantification absolue? | Utilise courbe standard détermine CT Equation de la droite : Ct=M(log(quantité))+b Quantité d’ADN : quantité=10^((Ct-b)/M) Nombre de copies chromosomes ou gènes utilisé pour déterminer la charge virale. |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Dans les analyses de données, quels sont les calculs de la quantification relative quand la méthode ΔCt? | Compare échantillon à un contrôle. Analyse augmentation/diminution par rapport contrôle Méthode ΔCt : Ratio(test/contrôle) = 2^(Ct(contrôle)–Ct(test)) = 2^(∆Ct) Ratio permet de dire gène est exprimé x fois plus que le contrôle |
| Les techniques d'amplification par PCR, qPCR : Dans les analyses de données, quels sont les calculs de la quantification relative quand la méthode 2^(-ΔΔCt)? | Pas plus 5% ≠ entre efficacité amplificat° gène réf et gène test. ΔCttest=Ct(x,test)–Ct(ref,test) ΔCtcont=Ct(x,cont)–Ct(ref,cont) ΔΔCt=ΔCtest–ΔCtcont Ratio normalisé=2^(-ΔΔCt). Donne ≠/variat° express° entre 2 condit° normalisé à une réf (gène ménage) |
| Les techniques de clonage : En quoi consiste le clonage? Que nécessite-il? | Consiste insérer fragment intérêt dans un vecteur Nécessite extraire et purifier vecteur et ADN inséré |
| Les techniques de clonage : Quels sont les méthodes qui permettent de récupérer et cloner un insert? Avec quoi est transformé l'ADN? | Méthode pour récupérer et cloner l’insert : - Digérer avec enzymes restrictions - Amplifier par PCR séquence intérêt ADN ligase -> ADN recombinant Isolement ADN recombinant en transformant cellules avec antibiotiques et gène résistance |
| Les techniques de clonage : Quels sont les enzymes de restrictions? | Endonucléase naturellement produites Système modification/restriction = mécanismes défenses bactéries contre infection phage Reconnait séquence spécifique de 4-8pb Séquence = palindrome, coupe 2 brins à la même position |
| Les techniques de clonage : Quels sont les différentes extrémité que l'on peut obtenir avec enzymes de restrictions par exemple? | Extrémité cohésive, bout franc ou protubérante |
| Les techniques de clonage, vecteurs de clonage : Comment se passe l'introduction du vecteur dans le plasmide? Que faut-il? | Dérivés plasmides naturels. Introduit par transformation ou conjugaison. Besoin d’une origine de réplication, marqueur de sélection et multisite de clonage (MCS) |
| Les techniques de clonage, vecteurs de clonage : Qu'est ce qu'un plasmide navette? Comment orienter l'insert? Qu'est ce qu'un site rapporteur? | Plasmide navette : ori bactérien + séquence réplication levure Enzymes différentes pour orienter l’insert Sites rapporteurs : lacZ, insert introduit ou non. Si oui, lacZ inactif -> colonie blanche |
| Les techniques de clonage, vecteurs de clonage : Pour quoi sont utilisés les vecteurs phagiques? Qu'est ce qu'un phagemide et un cosmide? | Utilise clone de phage. Ex : phage T7 ou λ Phagemide : plasmide avec origine phage M13 = produit plasmide simple brin Cosmide : site cos = plasmide encapsidé par phage. Plasmide plus grand (15-25kb) |
| Les techniques de clonage, vecteurs de clonage : Quels sont les deux chromosomes artificiel que l'on peut retrouver? | BAC : bactérie, insert ≈300kb. Maintenu comme chromsme (grand). Ori = autonome. Système partit° (stabilise ds cellule) YAC : levure, fragmt ADN ≈1000kb. Télomère extrémité, centromère, site clonage multiple, site rapporteur et séquence réplicat° autonome |
| Les techniques de clonage : Qu'est ce que la transformation? | Transfert horizontale de gène. Insertion dans une bactérie Cellule avec plasmide = transformant Fragiliser membranes rend cellules compétentes (permet acquérir ADN étranger) |
| Les techniques de clonage : Quelles sont les deux types de cellules que l'on peut retrouver dans la transformation? | Cellules chimiocompétentes : agent chimique, choc thermique Cellules électrocompétentes : choc électrique |
| Les techniques de clonage : Qu'est-il important d'avoir pour la cellule hôte et la sélection? | Machine réplication, réplisome compatible avec Ori. Chromosome code galactosidase = blanc-bleu Cellule sensible ampicilline car sélection cellules résistantes à l’antibiotique |
| Les techniques de clonage : Dans les cellule hôte et la sélection, quels sont les différentes caractéristiques du génomes que l'on peut retrouver? | Δ : délétion d’une région Φ80 : phage 80 gyrA : résistance à l’acide nalidixique recA : plasmide monomérique endA :pas de produit dégradé hsdR : pas dégradation ADN |
| Les techniques de clonage : Que permettent les vecteurs d'expression? Quel exemple peut-on avoir? | Production d’ARN ou protéines Ex : promoteur phage T7 reconnu par ARN pol T7 |
| Les techniques de clonage : Quels sont les caractéristiques des vecteurs d'expression? | Site clonage multiple : code prot Marqueur sélect° : antibiotique Ori : maintient plasmide Promoteur fort et inductible (induit l’express° prot). Hybride ou de phage Etiquette de purificat° et détect° Peptide signal : adresse prot dans périplasme |
| Les techniques de clonage, banque d'acide nucléique : Qu'est ce que la banque génomique? | Caractérise séquence particulière, établit carte physique génome, séquençage génome partiel ou total |
| Les techniques de clonage, banque d'acide nucléique : Qu'est ce que la banque ADNc? | Crée à partie population ARNm Extraire et purifier ADN génomique par : séquençage haut débit ou digestion par enzyme de restriction + clone Permet étude différents fragments |
Created by:
Julie.Lam
Popular Biology sets